RAS PhysicsКристаллография Crystallography Reports

  • ISSN (Print) 0023-4761
  • ISSN (Online) 3034-5510

Влияние плазменной обработки биомедицинских матриксов на адгезию нейрональных клеток

PII
10.31857/S0023476123600210-1
DOI
10.31857/S0023476123600210
Publication type
Status
Published
Authors
Volume/ Edition
Volume 68 / Issue number 6
Pages
983-989
Abstract
Адгезивные свойства матриксов, преимущественно зависящие от химических и структурных особенностей их поверхности, играют важнейшую роль в тканевой инженерии. С помощью флуоресцентной и растровой электронной микроскопии в режиме окружающей среды исследована адгезия клеток диссоциированной нейрональной культуры на изотропных и анизотропных нетканых и губчатых матриксах из полилактида. Нейроны, полученные из головного мозга новорожденных мышей, демонстрировали улучшенную адгезию на матриксах всех типов после обработки плазмой, при этом наиболее выраженный эффект наблюдался на неориентированных матриксах.
Keywords
Date of publication
15.09.2025
Year of publication
2025
Number of purchasers
0
Views
15

References

  1. 1. Suñol C., Babot Z., Fonfría E. et al. // Toxicol. In. Vitro. 2008. V. 22. P. 1350. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2008.03.009
  2. 2. Ji C., Tang M., Johnson G.V. // Methods Cell Biol. 2017. V. 141. P. 229. https://doi.org/10.1016/bs.mcb.2017.06.011
  3. 3. Wellbourne-Wood J., Chatton J.Y. // ACS Chem. Neurosci. 2018. V. 9. P. 1975. https://doi.org/10.1021/acschemneuro.8b00098
  4. 4. Zhang Y., Venkateswaran S., Higuera G.A. et al. // Adv. Healthc. Mater. 2020. V. 9. № 4. P. 1901347. https://doi.org/10.1002/adhm.201901347
  5. 5. Huang W., Sunami Y., Kimura H., Zhang S. // Nanomaterials. 2018. V. 8. P. 519.
  6. 6. Giordano G.G., Thomson R.C., Ishaug S.L. et al. // J. Biomed. Mater. Res. 1997. V. 34. P. 87. https://doi.org/10.1002/ (SICI)1097-4636(199701)34:1< 87::AID-JBM12>3.0.CO;2-M
  7. 7. Huang H.D., Xu J.Z., Fan Y. et al. // J. Phys. Chem. B. 2013. V. 117. P. 10641. https://doi.org/10.1021/jp4055796
  8. 8. Annunziata M., Nastri L., Cecoro G., Guida L. // Molecules. 2017. V. 22. P. 2214.
  9. 9. Okamura Y., Kabata K., Kinoshita M. et al. // Adv. Mater. 2009. V. 21. P. 4388. https://doi.org/10.1002/adma.200901035
  10. 10. Ястремский Е.В., Пацаев Т.Д., Михуткин А.А. и др. // Кристаллография. 2022. V. 67. № 3. С. 421. https://doi.org/10.31857/S0023476122030249
  11. 11. Morent R., De Geyter N., Desmet T. et al. // Plasma Processes Polym. 2011. V. 8. № P. 171. https://doi.org/10.1002/ppap.201000153
  12. 12. Asadian M., Chan K.V., Norouzi M. et al. // Nanomaterials. 2020. V. 10. P. 119.
  13. 13. Travnickova M., Kasalkova N.S., Sedlar A. et al. // Biomed. Mater. 2021. V. 16. № 2. P. 25016. https://doi.org/10.1088/1748-605X/abaf97
  14. 14. Yu X., Mengsteab P.Y., Narayanan G. et al. // Engineering. 2021. V. 7. № 2. P. 153. https://doi.org/10.1016/j.eng.2020.02.010
  15. 15. Santoro M., Shah S.R., Walker J.L., Mikos A.G. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2016. V. 107. P. 206. https://doi.org/10.1016/j.addr.2016.04.019
  16. 16. Kudryavtseva V., Stankevich K., Gudima A. et al. // Mater. Des. 2017. V. 127. P. 261. https://doi.org/10.1016/j.matdes.2017.04.079
  17. 17. Kleiman R., Banker G., Steward O. // J. Neurosci. 1994. V. 14. № 3. P. 1130. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.14-03-01130.1994
  18. 18. Sokolov I., Azieva A., Burtsev M. // Biologically Inspired Cognitive Architectures (BICA) for Young Scientists. Springer, 2016. P. 241.
  19. 19. Kopaeva M.Y., Azieva A.M., Cherepov A.B. et al. // Patogenez. 2021. V. 19. № 1. P. 74.
  20. 20. Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E. et al. // Nature Methods. 2012. V. 9. № 7. P. 676. https://doi.org/10.1038/nmeth.2019
  21. 21. Kudryavtseva V., Stankevich K., Gudima A. et al. // Mater. Des. 2017. V. 127. P. 261. https://doi.org/10.1016/j.matdes.2017.04.079
  22. 22. Poll H.U., Schladitz U., Schreiter S. // Surf. Coat. Technol. 2001. V. 142–144. P. 489. https://doi.org/10.1016/S0257-8972 (01)01055-6
  23. 23. Ivanov V.B., Behnisch J., Hollander A. et al. // Surf. Interface Anal. 1996. V. 24. P. 257.
  24. 24. Jordá-Vilaplana A., Fombuena V., García-García D. et al. // Eur. Polym. J. 2014. V. 58. P. 23. https://doi.org/10.1016/j.eurpolymj.2014.06.002
  25. 25. Bolbasov E.N., Maryin P.V., Stankevich K.S. et al. // Colloids Surf. B. 2018. V. 162. P. 43. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2017.11.028
  26. 26. Yang L., Chen J., Guo Y., Zhang Z. // Appl. Surf. Sci. 2009. V. 255. № 8. P. 4446. https://doi.org/10.1016/j.apsusc.2008.11.048
  27. 27. Wang M., Favi P., Cheng X. et al. // Acta Biomater. 2016. V. 46. P. 256. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2016.09.030
  28. 28. Nakagawa M., Teraoka F., Fujimoto S. et al. // J. Biomed. Mater. Res. A. 2006. V. 77. P. 112. https://doi.org/10.1002/jbm.a.30521
  29. 29. Teraoka F., Nakagawa M., Hara M. // Dent. Mater. J. 2006. V. 25. P. 560. https://doi.org/10.4012/dmj.25.560
QR
Translate

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Higher Attestation Commission

At the Ministry of Education and Science of the Russian Federation

Scopus

Scientific Electronic Library